El FluoView™ 300 es un microscopio confocal de barrido de punto, detección de punto y barrido láser diseñado para aplicaciones de investigación biológica. Las características clave del FluoView™ 300 de Olympus son la excelente resolución, la eficaz excitación, la interfaz inteligente y un precio asequible.

El FluoView™ 300 está configurado para permitir la recolección simultánea de hasta 3 tubos de detección. El FV300 se puede configurar en la plataforma invertida del microscopio IX2 o la plataforma vertical del microscopio BX2.

CATÁLOGOS:

!Aviso! La información de los siguientes catálogos solo esta disponible en Inglés.

FluoView 300 Catalog (PDF) 2.28MB
FluoView LD405 Catalog (PDF) 1.39MB
UIS Fluorescence Mirror Units Technical Specs (PDF) 448KB
UIS Objetives for Life Science Catalog (PDF) 360KB
Biological Microscopes (PDF) 3MB

· La microscopía confocal mejora las imágenes convencionales de fluorescencia al captar la fluorescencia generada desde el plano focal en la muestra, rechazando cualquier otra luz que provenga desde abajo o arriba del plano focal. La eficiente óptica confocal de barrido de punto y detección de diafragma de los sistemas FluoView elimina virtualmente la luz "fuera de foco" y produce imágenes de alto contraste con una resolución extraordinaria.
· Los sistemas FluoView son estaciones de trabajo totalmente integradas que incorporan programas de toma y análisis de imágenes fáciles de usar con óptica confocal de alta resolución que no requiere de alineación por parte del usuario.
· Una interfaz gráfica basada en Windows y fácil de usar permite que nuevos usuarios generen imágenes rápidamente en varias modalidades de barrido como XY, XZ, XT, XYZ, XYT y XYZT. Los formatos estándar de imágenes son el TIFF y el AVI, que permiten la exportación fácil y directa de imágenes FluoView a paquetes de análisis sin conexión.
· El barrido XY se realiza con un par de galvanómetros de espejo, lo cual proporciona un rango amplio de barrido que cubre hasta un número de campo de 20. El zoom óptico (con hasta 10 aumentos) puede realizarse estrechando el rango de barrido y manteniendo la máxima resolución de 2048 x 2048 píxeles.
· Los microscopios automatizados de Olympus pueden controlarse interactivamente a través del programa del FluoView con motor de paso interno de resolución Z de 0.01 micrones.
· La fluorescencia pasa a través de una apertura confocal, con 5 diámetros diferentes de apertura posibles. El diámetro óptimo de apertura se indica en el software y está basado en el aumento del objetivo y la apertura numérica.
· Las imágenes de campo claro y DIC se pueden registrar simultáneamente con las imágenes de fluorescencia confocal. Las imágenes de luz transmitida, si bien no son confocales, son muy útiles cuando se superponen con la imagen confocal.
· Las observaciones cronológicas son posibles en el FluoView con una velocidad de hasta 4 imágenes/s a 512 x 512 e intervalos de barrido de línea de 0.5ms por línea. Se pueden realizar análisis cinéticos y radiométricos para la cuantificación de cambios de fluorescencia en células vivas a lo largo del tiempo. También es posible ver en tiempo real el trazo de intensidad e imágenes radiométricas.
· Se pueden diseñar y ejecutar con rapidez experimentos de parámetros múltiples a través del potente software PAPP (procesador de protocolo de toma de imágenes programable), que está incluido en el software FluoView. Con el software PAPP, se pueden generar fácilmente protocolos avanzados cronológicos que incluyen fotoblanqueado, fotoactivación o toma de imágenes en varios puntos y grabarlos como protocolos de rutina.
· Pueden generarse señales TTL I/O para coordinar experimentos temporizados con instrumentación externa.

Modos de Barrido:
· Barrido XY: Capta una imagen óptica confocal. Es posible la rotación de 360° de la imagen.
· Barrido XYZ: Capta una serie de imágenes ópticas confocales XY a través del espesor de la muestra.
· Barrido XZ: Capta una imagen de corte transversal que no puede obtenerse con un microscopio convencional. El corte transversal se puede rotar 360° o dibujar como línea libre (línea Z libre).
· Barrido XYT: Capta una imagen óptica confocal XY durante un intervalo de tiempo seleccionado de forma arbitraria. Permite la observación y análisis de la cinética de células vivas (variaciones en el calcio intracelular, pH, etc.).
· Barrido XT: Capta una imagen de una línea durante un intervalo para un análisis cronológico de alta resolución temporal. El corte transversal se puede rotar 360° o dibujar como línea libre (línea T libre).
· Barrido de punto: Capta una serie alteraciones de intensidad en un punto de la imagen con la máxima resolución temporal.
· Barrido XYZT: Capta una serie XYZ en un intervalo de tiempo, permitiendo la observación y análisis cronológico de cambios tridimensionales en células vivas.
· Platina de barrido automático: La toma de imágenes en varias zonas puede realizarse con la mayoría de los modos de imagen, incluidos XYZ, XYT y XYZT con la incorporación de una platina de barrido automático opcional.

Opciones de Láser:
· Láser de argón azul (488nm)
· Láser de argón multilínea (457nm, 488nm, 514nm)
· Láser de helio-neón verde (543nm)
· Láser de helio-neón rojo (633nm)
· Láser de criptón amarillo (568nm)
· Láser de helio-cadmio de 442nm
· Diodo láser de 440 nm
· Diodo láser de 405 nm

Existen dos tubos fotomultiplicadores (PMT) ubicados directamente en el haz de luz emisor de fluorescencia confocal del FV300 para lograr una detección de la señal de fluorescencia de alta sensibilidad. Se puede utilizar un PMT aparte para la detección simultánea de imágenes de alta resolución de campo claro o DIC sobre las cuales se pueden superponer las imágenes fluorescentes confocales.

Se pueden generar imágenes de hasta 3 canales de detección simultáneamente. El barrido de imagen puede realizarse hasta de 2048 x 2048 píxeles, con cada imagen digitalizada en 4096 tonalidades de gris (12-bit) para permitir la observación de detalles finos. También se pueden obtener imágenes en un modo secuencial automatizado para reducir los cruces espectrales entre canales en las imágenes de múltiples colores.

Existe una apertura confocal ubicada directamente en el haz de emisión de luz de 5 tamaños diferentes seleccionables por el usuario. El software del FluoView™300 indica la apertura apropiada de acuerdo con el aumento y la apertura numérica del objetivo utilizado.

Un gran surtido de láser, Argón (488nm), Helio Neón Verde (543nm), Criptón Amarillo (568nm), Helio Neón Rojo (633nm) y Helio Cadmio (442nm), se ofrecen para ajustarse a la mayoría de las aplicaciones de fluorescencia. Cada línea de láser puede ser regulada independientemente a través de ruedas de filtros de densidad neutral controladas por un programa de computación o a través de un filtro acústico-óptico modulable (AOTF) para la captura simultánea o secuencial-automatizada de imágenes de múltiples canales. Existe la opción de diodo láser de 440nm y láser de helio-cadmio de 442nm para aplicaciones CFP/YFP FRET, lo que proporciona óptima excitación de CFP y separación espectral del YFP.

Incluye asimismo el diodo láser de 405nm para la mayoría de las aplicaciones de imágenes UV, incluidas las imágenes de núcleos con DAPI. La nueva modulación láser del diodo láser de 405nm permite el rápido control de la intensidad de luz, lo cual puede ser importante para estudios de fotoactivación y fotoblanqueado. La excepcional estabilidad de luz del diodo láser de 405nm también es importante para estudios cronológicos de células vivas.

La flexibilidad en la selección del estativo del microscopio, líneas láser y filtros ópticos permite a los investigadores configurar el FV300 para sus necesidades investigadoras específicas.

*FluoView™ es una marca registrada de Olympus.

Toda la gama de productos de Olympus corregidos al infinito son compatibles con el sistema del microscopio confocal FluoView™ FV300. Objetivos UIS2

· Detector de luz transmitida con óptica de campo claro y/o DIC
· Tubo de observación con puerto para vídeo
· Software para estudios cronológicos y radiométricos

I.C.T, S.L.
INSTRUMENTACIÓN CIENTÍFICA TÉCNICA, S.L.
Tel. (+34) 902 193 170 · Fax (+34) 902 193 167
Web: http://www.ictsl.net/ E-mail: comercial@ictsl.net